DC 和巨噬细胞的都懂,GM-CSF 加多少真的是门玄学。
10、20、25、40、50 ng/mL……每个体系不一样,换液时间还各说各话,翻文献翻到凌晨。
为此我们把 16 篇文献的条件拆出来做了横向对照,浓度从 10 到 50 ng/mL、从单独用 GM-CSF 到各种成熟 cocktail 都覆盖了,往下看(电脑端查阅效果更佳)。
1 GM-CSF 单独诱导不添加 IL-4 的经典方案 | | | |
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| | | 持续培养约 8 d,得到 CD11c+ DC-like cells,属经典小鼠 BMDC 体系 |
| | | 2×10⁵ cells/mL;第 3 天补含 GM-CSF 培养液,第 6 天换 1/3 液;5 ng/mL CpG 过夜刺激促成熟 |
| | | 10⁶ cells/mL,培养 7 d,第 3 天换液一次;可分出表型不同的 DC 与 macrophage |
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| 早期 BM-derived DC / MDSC-like | | 单独 10 ng/mL,或 10 ng/mL + IL-4 5 ng/mL;培养 3–7 d,早期即出现 CD11c+ DC,髓系异质性明显 |
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共 7 条培养条件 | 文献报道条件,仅供科研参考2 GM-CSF + IL-4 及成熟 / 特殊亚群方案含 cocktail 成熟、Langerhans 样 DC、IL-15 DC | | | |
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| | | 约 7–8 d 出现典型 DC 形态,以及 CD11c / CD80 / CD86 / MHC-II 表型 |
1000 U/mL + IL-4 500 U/mL 后加 LPS | | 人 / 小鼠 GM-CSF + IL-4 来源 DC | 先得到 immature DC,再用 LPS 促成熟;常用 CD80 / CD83 / CD86、MHC-II 与细胞因子作为分析指标 |
100 ng/mL + IL-4 10 ng/mL 后加 TNF-α | | | 分化约 6 d,再加 TNF-α 24 h,成熟度进一步提升 |
1000 U/mL + IL-4 500 U/mL 后加 cocktail | | | 先 GM-CSF + IL-4 分化,再用 cocktail(TNF-α 50 ng/mL + IL-1β 10 ng/mL + IL-6 100 ng/mL + PGE2 1 μg/mL)促成熟,属参考度较高的成熟 DC 体系 |
250 ng/mL + IL-4 100 ng/mL + TGF-β1 | | | 培养 5–7 d,出现 CD1a、E-cadherin、CLA 等 LC 相关表型,并可观察到 Birbeck granules |
100 ng/mL + IL-4 10 ng/mL + TGF-β1 10 ng/mL 再加 TNF-α | | | 在 TGF-β1 基础上加 TNF-α,可进一步增强 Langerin 表达、降低 DC-SIGN |
100 ng/mL + IL-15 200 ng/mL | IL-15 DC / Langerhans-like DC | | 培养 6 d,可得到 Langerin、E-cadherin / CCR6 特征较明显的一群 DC |
800 IU/mL + IL-15 200 ng/mL | | | 短期培养约 2 d 得到 immature IL-15 DC,后续可继续成熟;对照体系为 800 IU/mL GM-CSF + 20 ng/mL IL-4 |
共 9 条培养条件 | 文献报道条件,仅供科研参考◆ 划重点 ◆
其实没有标准答案,只有适配你体系的浓度。
▪ 小鼠 BMDC 里 20 ng/mL 出现的频率比较高;
▪ 想同时拿到 DC 和 macrophage,可以试试 25 ng/mL 的混合体系;
▪ 人的单核来源细胞,低剂量偏长期培养、50 ng/mL 更常见的是 7 天方案;
▪ 加不加 IL-4,取决于你下游要看什么表型。
以上都是文献报道的培养条件,仅供科研参考。血清批次、细胞状态、培养箱环境都会影响结果,建议先做小规模预实验摸条件,再放大。